Карантин нових риб: Сучасна практика в зоопарках і акваріумах

Легуллез, каріофіллез і чорнильна захворювання

а) при проектуванні і будівництві риборозплідників, рибоводних господарств і рибоводних ставків використовувати благополучні щодо інфекційних та інвазійних захворювань риб водойми, віддалені від тваринницьких будівель, фабрично-заводських і комунальних підприємств, звідки забруднені стічні води не повинні потрапляти в ставки рибоводів щоб уникнути отруєння риб.

Стічні води заводських і фабричних підприємств можуть бути використані після знешкодження їх згідно з правилами Держсанінспекцією, що включає певні кількісні показники для вод, що скидаються;

б) обладнати головний ставок спускним пристроєм для забезпечення швидкого спуску води і повного проведення оздоровчих заходів, в разі появи в ньому інфекційних хвороб риб;

в) риборозплідники будувати і розташовувати по річці вище нагульних ставків, з тим, щоб уникнути попадання в них води, зараженої збудниками інфекційних та інвазійних хвороб риб. Будівництво та переобладнання риборозплідників і ставків для розведення риб повинне бути погоджене з ветеринарним наглядом;

г) забезпечити риборозплідники самостійним водопостачанням, не допускаючи використання води з інших рибоводних ставків, мати маткові ставки і не менше 2-х карантинно-ізоляторних ставків;

д) для розведення риб використовувати тільки здорову рибу та ікру з рибоводне господарство, благополучного щодо заразних хвороб риб;

е) за кожним ставком або групою ставків закріпити постійний рибоводний інвентар.

2. Перевезення риби для розведення і акліматизації дозволяється проводити тільки при наявності ветеринарного посвідчення, що підтверджує благополуччя щодо заразних хвороб риби і ставків, звідки ця риба вивозиться.

3. Інформація, що надходить в ставкове господарство риба підлягає карантинування в карантинних ставках протягом не менше 20 днів. Якщо температура води в карантинних ставках знижується нижче 12 °, то термін карантинування подовжується на такий час, при якому середньодобова температура води протягом 20 днів поспіль не буде нижче 12 °. Температура в карантинних ставках і водоймах записується в спеціальному журналі, який зберігається в справах даного господарства.

4. Для створення рибі сприятливих санітарно-гігієнічних умов у ставках і водоймах з рибою забороняється мочка льону, конопель, шкір та іншої сировини.

а) спускні, нагульні, маткові і вирощувальні ставки залишати на зиму без води для проморожування дна;

б) щорічно, після осіннього повного вилову риб заболочені ділянки та дно нагульних і вирастних ставків піддавати вапнування або дезінфекції негашеного вапном;

в) не допускати надмірного заростання ставків водною рослинністю. Цю траву протягом літнього сезону викошують не менше трьох разів;

г) орати навесні ложе вирощувального ставка, а в господарствах рибоводів південних районів, крім того, засівати його вико-вівсяної сумішшю до пересадки мальків з нерестових ставків;

д) просушувати ложе зимувальних ставків протягом усього літа з переорювання його, або використанням під просапні і городні культури.

6. У разі появи захворювання риб, керівники господарств зобов’язані негайно повідомити про це ветеринарного лікаря, і до його прибуття не допускати вилову і вивезення риби з водойм, де встановлено заразне захворювання.

7. При появі в рибоводне господарство інфекційних хвороб – геморагічної септицемії (краснухи) коропів, бранхіомікоз, фурункульозу лососевих, инвазионного захворювання коропів костіазісом, інвазійних захворювань лососевих іхтіофтіріазісом, сангвініколезом і лентоспорозом, – на господарства або водойми накладається карантин терміном на 1 рік.

а) вивозити і ввозити рибу для цілей розведення з карантінірованних водойм в інші господарства або водойми.

Примітка: В окремих випадках, з дозволу ветнадзора, дозволяється ввозити в карантинної рибоводне господарство здорову рибу для зариблення оздоровлених від інфекції ставків, не пов’язаних з іншими водоймами; б) здійснювати посадку привезених здорових риб з рибами в карантінірованний ставок;

в) переносити і перевозити рибоводний інвентар з одного рибоводне господарство або ставка в інше, а також відвідування рибоводних ставків сторонніми особами.

8. рибоводне інвентар, знаряддя лову риби та засоби пересування, що знаходилися в зіткненні з хворими рибами, піддаються дезінфекції, як зазначено в розділі дезінфекції цієї інструкції.

9. З метою оздоровлення рибоводних ставків, уражених інфекційними та інвазійними хворобами риб, проводиться летование заражених ставків, дезінфекція або поступове оздоровлення рибоводно ставка, шляхом виховання імунного до даного захворювання стада риб, замкнутого в межах даного рибоводне господарство.

10. У заражених рибоводів забороняється застосування високої щільності посадки риби в ставках, так як це призводить до масової загибелі риби та ускладнює ліквідацію інфекції.

11. При важких умовах ліквідації інфекційних захворювань ставкових риб – рибоводне господарство переводять на вирощування риб менш сприйнятливих до даної інфекції, наприклад, в ставках інфікованих геморагічної септицемией (краснуха коропів), – можна вирощувати карася або лина.

12. Карантин з рибоводне господарство знімається через рік після оздоровлення риб і проведення закріпних заходів.

13. При появі інвазійних хвороб ставкових риб (хілодоніллез, тріходініазіс, гіродактілез, дактілогіроз) – хворим рибам застосовують лікувальні ванни з 5-процентного водного розчину хлористого натрію (повареної солі), як зазначено в розділі щодо застосування цих ванн.

Карантин при цих захворюваннях не накладаються, а вводиться обмеження, при якому допускається вивезення риби для розведення тільки після пропускання її через зазначені ванни безпосередньо перед самою перевезенням. Перед посадкою на зимівлю сеголетков коропа і сазана, з профілактичною метою їх пропускають через зазначені ванни для зниження відходу риби в період зимівлі.

22. Втратив чинність. – Тимчасова інструкція від 1 березня 1967 р

Див. Попередню редакцію

протоколи карантину

Більшість установ мали окремими карантинними протоколами для прісноводних кісткових риб і хрящових риб (66%, 25/38) (Таблиця 1). Кілька з них мали окремі протоколи для холодноводних видів, хоча відмінності між протоколами для холодноводних і тепловодних видів варіювали від установи до установи (три організації використовували тривалий період карантину для холодноводних риб, і п’ять організацій не використовували сульфат міді для обробки холодноводних риб).

Таблиця 1. Протоколи карантину. Різноманіття по групам риб серед установ з замкнутими карантинними системами

Групи риб % Установ (n = 38)
ні протоколів 5
загальні протоколи 16
Прісноводні кісткові, морські кісткові, хрящові 32
Прісноводні кісткові (холодноводні / тропічні), морські кісткові (холодноводні / тропічні), хрящові 16
Прісноводні кісткові (холодноводні / тропічні), морські кісткові (холодноводні / тропічні), хрящові, голкові 13
Прісноводні кісткові, морські кісткові, хрящові, голкові 5
інші 13

Всі установи пристосовували свій протокол карантину в залежності від відомої або передбачуваної сприйнятливості виду риб. Наприклад, голкові (Syngnathidae) вважалися «чутливими» в більшості установ, і в деяких з них для даної групи риб розроблялися окремі протоколи. Вони виключали використання сульфату міді, нитрофуранов, виключали або допускали мінімальні дози формаліну в складі кормових науплій артемії (Artemia) (18%, 9/38).

тривалість карантину

Майже всі установи витримували мінімальний термін карантину 30 днів і більше (95%, 35/37). Мінімальний термін карантину був довший для холодноводних видів риб (45-60 днів). Багато організацій доповідали про те, що карантин доводилося продовжувати, так як починалася медикаментозна обробка. Найтриваліший карантин становив 90 днів.

діагностика

Всі організації регулярно спостерігали за здоров’ям риб. Багато – перевіряли кісткових риб вручну (41%, 15/37). Перевірка включала біопсію зябрової тканини, паркан луски. Дрібні кісткові риби зазвичай спостерігалися в групах (5-10%), тоді як великі кісткові – окремо. Більшість установ проводило рутинну ручну діагностику хрящових риб (54%, 20/37), включаючи забір луски, ендоскопію / біопсію зябрової тканини, морфометричні дослідження, діагностичне сканування (радіографія, ультрасонографія), аналіз крові, посіви крові, аналіз фекалій, аспірат з целома і специфічні аналізи (мікрочіпування). Решта установи не проводили рутинну діагностику, але вдавалися до неї при підозрі на захворювання (46%, 17/37).

Всі організації проводили аутопсію загиблих в ході карантину особин, і кілька доповідали про те, що явно хворі риби піддавалися евтаназії з подальшою аутопсії. Фахівці одного з установ забирали 2% найменш цінних особин і проводили аутопсію. Патогістологічне дослідження проводилося рідко: деякі організації виконували його на всіх загиблих особин, які були досить свіжими, хоча при масовій загибелі аналізу піддавалася лише частина особин (15%, 4/26);

Діагностика, як правило, проводилася ветеринарами (ветеринари і ветеринарними техніками) і студентами (53%), іншими співробітниками установи (10%), або всіма разом (37%, 11/30).

Обробка

Майже всі установи, що мають замкнуті системи перетримки, в ході карантину використовували медикаменти (94%, 34/36). Найчастіше застосовувалися протоколи, представлені в таблиці 2. Кілька установ частіше вдавалися до профілактичної обробки риб, які прибули з великих точок збуту і, які призначалися для великих виставок.

Більшість установ змінювали солоність води під час карантину, включаючи занурення прісноводних видів, гіперсолевие ванни з низькою солоністю, і занурення морських особин (Таблиця 2). Протоколи часто включали специфічні умови (адекватна температура, pH) занурення риб і ванн. Деякі організації також використовували занурення в розчин з метою діагностики.

Засобом обробки кісткових і деяких хрящових риб зазвичай був формалін (Таблиця 2). Дозування і тривалість впливу варіювали, хоча більш високі дози корелювали з більш низькою тривалістю обробки. Максимальна концентрація препарату часто вносилася на вході і на виході з карантину.

Більшість протоколів вимагали підвищення аерації під час дії формаліну. Групи риб, що мають високу чутливість до цієї речовини, виключалися з обробки або концентрація формаліну була зниженою (голкові (Syngnathidae), риб без луски). У 23 організаціях, що використовують формалін, 4% аналізували його концентрацію у воді, 9% традиційно використовували формалін з малахітовим зеленим.

Обробка сульфатом міді була поширена серед морських кісткових риб (Таблиця 2). До неї вдавалися в прісноводних системах або, коли лужність була нижче 50 млн-1. Концентрацію міді повільно підвищували з 3 по 7 день. Її вимірювали раз в день і при необхідності доводили до терапевтичного рівня. Групи риб, що відрізняються високою чутливістю до іонів міді, іноді оброблялися інакше (голкові, молодь тропічних морських риб, деякі холодноводні риби).

Хлорохін рідко включався в карантинні заходи і зазвичай застосовувався для обробки кісткових риб, в якості альтернативи сульфату міді, або при специфічних загрози (Cryptocaryon, Ichthyophthirius, Amyloodinium). Часто в протоколах прописувалась необхідність затемнення ємності на період занурення в розчин. З 12 використовують хлорохин установ, 25% вимірювали його концентрацію у воді.

Органічні фосфати не входять до групи традиційних засобів обробки при карантині, проте їх застосовували проти специфічних паразитів, що мають стійкість до інших препаратів (Веслоногие і равноногим ракоподібні, п’явки і деякі моногенні). У трьох установах органічні фосфати виступали альтернативою ваннам з празиквантелом для обробки хрящових риб.

Проте, Празиквантел був більш кращий і застосовувався, де було можливо (8%, 3/37). Майже всі установи серед органічних фосфатів вибирали Хлорофос (92%, 12/13). Вимірювання концентрації медикаменту в воді не проводилося. Іноді, в якості альтернативи, використовувалися люфенурон і Діфлубензурон.

Часто для обробки кісткових риб застосовувався Фенбендазол. У більшості випадків він вводився орально в складі желатіноподобную корми. Концентрація препарату варіювала. Для великих риб Фенбендазол іноді дозувався на основі індивідуальної маси тіла і скармливался разом з живцем. Для голкові, цей препарат часто вводився в артемію;

Метронідазол рідко використовувався. Він вносився орально з желатінообразний кормом, в різних дозах. Для великих риб препарат іноді скармливался разом з живцем.

У практиці карантину був поширений Празиквантел, зокрема, для обробки зануренням хрящових і морських кісткових риб. Ванни з високою концентрацією препарату часто використовувалися на вході і на виході з карантину. Кілька установ доповідали про використання знижених доз для обробки голкові, або виключення Празиквантел з обробки.

Так як цей препарат малорастворим в воді, його доводилося розчиняти в етанолі, або пропускати через дрібне сито для розчинення. З 29 установ, що використовують Празиквантел в ваннах, 3% вимірювали його концентрацію у воді. Оральний спосіб введення з желатінообразний кормом переважно практикувався для кісткових риб або для особин з великих систем карантину.

Багато установ практикували внесення нитрофуранов в різних комбінаціях (нітрофуразон, фуразолідон і метиленовий синій). Ці антибактеріальні засоби зазвичай додавалися в воду на початку карантину і залишалися протягом 5-10 днів. Більшість організацій не обробляли голкові риб нитрофуранами.

Інші антибіотики застосовувалися рідко: в двох установах на початку карантину кісткових риб вносилася оксолінова кислота і окситетрациклін (6%, 2/36). Більшість респондентів вдавалися до антибіотиків тільки у відповідь на бактеріальне захворювання шкіри або інші симптоми системного запалення (тобто гіперемія).

Два установи практикували вакцинацію голкові риб інактивованих формаліном вібріонами (6%, 2/36) та дві установи (6%, 2/36) використовували DCDHA Selco (Inve Aquaculture, Солт-Лейк-Сіті, США) дезінфекцію Артемій для голкові з метою зниження змісту Vibrio spp.

Очищення і дезінфекція

46. ​​Дезінфекцію проводять у випадках, коли в ставках рибоводне господарство має місце інфекційне захворювання риб або загроза занесення інфекції з інших рибоводів і природних водойм.

47. Для дезінфекції невеликих нерестових, зумовлених, карантинно-ізоляторних, маткових і вирастних ставків застосовують негашене вапно. Вапно, призначену для дезінфекції, слід зберегти в критому, сухому приміщенні.

48. З ставків, які підлягають дезінфекції, спускають всю воду і по мокрому дну рівномірним шаром розсіюють порошкоподібну вапно за допомогою ґратчастих носилок, відер, лопат і ручних дегазаційних візків. Робітники, що виробляють дезінфекцію, повинні бути забезпечені захисними окулярами.

49. Через 1 – 3 години після внесення вапна слід окропити її водою з дезінфекційних або зрошувальних апаратів, щоб утворилося вапняне молоко покривало ложе ставка тонким шаром.

Мокрі укоси гребель і землю в береговій зоні ставка також поливають 5-процентним вапняним молоком. Гідроспоруди двічі дезінфікують 10-процентним розчином вапна.

50. Через 15 – 20 днів розчин вапна переходить в нешкідливий для риб розчин вуглекислого кальцію. Після закінчення цього терміну ставок промивають водою. Якщо посадку риби в дезінфіціруемий ставок виробляють не раніше, ніж через місяць, то промивати водою ставок не слід, а навпаки, залишають вапняний розчин в ставку в якості удобритель. Вапно покращує санітарний стан ставка.

51. Дезінфекцію ставків виробляють при температурі води не нижче 10 °, тому що чим вище температура розчину вапна, тим сильніше його дезинфікуючу дію.

Великі площі нагульних і вирастних рибоводних ставків піддають летование осушуваних їх ділянок і дезінфекції зволожених і заболочених ділянок.

Летование засноване на дії сонячного світла і висушуванні грунту ложа водойми до 10 – 15 ° її абсолютної вологості. У липні проводиться оранка на глибину 8 – 10 см без боронування. Русло річки, зволожені і заболочені ділянки дезінфікують негашеним вапном.

52. Для дезінфекції ставків, інфікованих збудниками геморагічної септицемії (краснуху) коропів, інвазованих костіазісом, хілодоніазісом і ін. Хворобами, використовують негашене вапно з розрахунку по 25 цнт. на кожен гектар дезінфіціруемой площі.

53. Зимувальні ставки дезінфікують навесні, в середній смузі – в квітні або травні, в південній смузі – в лютому – березні, після пересадки з них риби в нагульні і інші ставки. Ложе ставка після висихання розчину піддають оранці, після чого використовують під городні або просапні культури.

Дезінфекцію зимувальних ставків проводять обов’язково у всіх неблагополучних щодо захворювання риб рибоводів.

54. Нерестові ставки дезінфікують після пересадки мальків в вирастних ставки. Ложе нерестових ставків після дезінфекції (без промивання) орють і боронують, а осушувальні канали очищають. До осені, коли дно ставків покривається рослинністю, можна вважати нерестові ставки приготованими до нересту наступного року.

55. вирастних ставки дезінфікують після вилову хворий риби. Розчин вапна залишають в ставку до його висихання, після чого ложе ставка піддають оранці восени або ранньою весною наступного року і засівають вико-вівсяної сумішшю (південні райони). До періоду пересадки мальків в вирастних ставки вико-вівсяну суміш прибирають на сіно. У цьому випадку також використовують вапно, як дезінфектор і удобритель.

56. ЖИВОРИБНА бочки ретельно миють спочатку водою, а потім 3-процентним водним розчином хлорного вапна (30 г хлорного вапна на 1 літр води) протягом 40 хвилин. Після всього бочки промивають окропом до повного видалення запаху хлору. Дезінфікувати бочки можна також 10-процентним вапняним молоком, ретельно обмиваючи їх усередині і зовні не менше однієї години з наступним обмиванням окропом.

57. Брезентові чани для перевезення риб в автомашинах і живорибних візках спочатку миють до повного видалення всього бруду, потім дезінфікують шляхом кип’ятіння в котлі протягом однієї години. Можна застосувати інший спосіб: в дерев’яний чан закладають негашене вапно з розрахунку 2,5 – 3 кг на 100 л води і заливають чистою водою.

58. Дерев’яний рибоводний інвентар – сортувальні столи, діжки, рибні носилки, дерев’яні ручки сачків, багри, гаки та ін. Піддають механічному очищенню та мийці водою, а потім протягом 40 хвилин кілька разів змочують або зрошують 3-процентним водним розчином хлорного вапна, після чого промивають окропом до видалення запаху хлору. Відра дезінфікують шляхом промивання їх протягом 10 – 15 хвилин 3 – 5-процентним гарячим розчином соди або 10-процентним вапняним молоком.

59. Неводи, брудні, сітки, сачки та інші знаряддя лову ретельно промивають в чистій ставкової або річковій воді для видалення бруду, а потім обробляють дезинфікуючим розчином мідного купоросу (в 100 л води розчиняють 500 г кристалічного мідного купоросу), шляхом занурення в нього на 2 години, після чого їх ретельно промивають чистою водою.

60. Спецодяг миють в гарячій воді з милом, потім кип’ятять не менше півгодини з пральним порошком або з лугом. Шкіряне взуття рясно змащують березовим дьогтем. Гумове взуття обмивають 10-процентним вапняним молоком протягом 10 – 15 хвилин.

61. Рибоводи і робочі після роботи з хворої або підозрілої по заразне захворювання рибою виробляють дезінфекцію рук шляхом ретельного миття водою з милом, а потім хлорного водою (1 – 2 г хлорного вапна на 1 л води) або 70-процентним розчином спирту.

Примітка: хлорне воду використовують тільки в день її приготування.

Після проведення ванн, в більшості організацій для адсорбції препаратів використовувався активоване вугілля (58%, 19/33). З цих дев’ятнадцяти – 84% скидали відпрацьований вугілля в міську каналізацію, 5% спалювали, 11% користувалися послугами професійних підрядників.

Половина установ проводили дезінфекцію ультрафіолетом в деяких карантинних системах (52%, 14/27). Ряд установ обладнав озонатори на невеликому числі карантинних систем, або озонували систему після її використання (22%, 6/27). Багато установ не користувалися УФ-стерилізаторами і озонаторами (44%, 12/27).

Устаткування після карантину, в більшості випадків, оброблялося білизною або іншим хлорвмісних дезинфікуючим засобом після осушення ємності (74%, 25/34). Також застосовувалися інші продукти, включаючи перекісні речовини, іодофори, четвертичное амонієве з’єднання, бігуаніди, спирти, полімерні сполуки і прісна вода для обробки обладнання морської системи.

Очищення і дезінфекція відрізнялися серед організацій. Якщо в ході карантину не діагностувалося захворювання, більшість з них не перезапускати систему. Багато установ протягом деякого часу тримали систему вільної від риб, хоча часто це було обумовлено серійністю поставок. Деякі установи осушалі систему або використовували білизну та інші містять хлор кошти.

Обговорення

В опитуванні брало участь 42 організації. Хоча респонденти представляють лише невелику вибірку серед зоопарків і акваріумів, що містять риб, більшість з них акредитовано AZA і мають великі площі. Таким чином, результати повинні відображати поточну практику карантину в індустрії.

Ізоляція є ключовим компонентом карантину. Ідеальним варіантом профілактики інфекції виступає виділення окремого персоналу і області для проведення карантину. Хоча поява спеціального персоналу зазвичай пов’язане з великим числом придбаних риб, виділення окремого простору для карантину не корелює з об’ємом закупівель.

Більшість установ також проводили карантин в резервних ємностях. Не дивлячись на відособленість цих систем, їх близькість до систем з колекційними тваринами підвищувало ризик перехресного зараження за допомогою бризок, освіти аерозолів і фомітов (предмети, що знаходяться в контакті з хворими і здатні перенести захворювання).

Багато організацій рідко або іноді проводили карантин риб прямо на виставці. Якщо виставка порожня, то така практика не наражає на небезпеку колекційних тварин, проте сама схема виставки обмежує моніторинг, доступ і можливості обробки риб. Проте, карантин практикувався на виставці з різних причин (рідкісний вид риби, бідна колекція, недостатньо резервного місця). Це підвищувало ризик контакту колекційних тварин з новими патогенними організмами і обмежувало можливості моніторингу, доступу і обробки.

Кісткові, хрящові риби і безхребетні містилися в карантині окремо, якщо це було можливо. Даний підхід розширив можливості обробки, так як кілька препаратів, призначених для кісткових риб, потенційно токсичні для ряду безхребетних тварин і хрящових риб (сульфат міді, органічні фосфати).

Існувала висока варіабельність карантинних заходів серед установ, що було пов’язано зі спектром придбаних видів риб і площею приміщень. Однак кілька методів і режимів обробки застосовувалися в понад 50% установ з замкнутими системами карантину (Таблиця 3). Більшість організацій використовувало різні протоколи для прісноводних кісткових, морських кісткових і хрящових риб.

Багато також мали окремі протоколи для холодноводних і тропічних видів, хоча ці відмінності варіювали серед установ. Багато мали специфічними протоколами обробки голкові риб, які припускали зниження дози ліків і, в деяких випадках, введення вакцин від вібріозів і дезінфекцію корми.

Організація AZA визначила 30-денний карантин в якості адекватного стандарту для риб, але для деяких видів або захворювань цей проміжок вкорочувався або подовжувався. 95% цих закладів з замкнутими системами карантину обрали мінімальний період в 30 днів або більше. Цей результат схожий з результатами опитування 21 організації в Європі, де 86% з них проводили карантин 30 днів і більше.

В даному дослідженні тривалість карантину часто була більше, що пов’язано з обробкою або змістом холодноводних видів риб, у яких збудник і клінічні прояви виникали пізніше. Деякі установи доповідали про ситуаціях, коли практичні обмеження вимагали скорочення карантину на термін менше 30 днів, зокрема, для великих акул.

Всі установи проводили спостереження і оцінку стану тварин і діагностику, коли риба відрізнялася хворобливістю. Згідно з літературними даними, рекомендується брати для аналізу підгрупу особин з кожної популяції. Цією практики дотримувалася половина організацій. Діагностика кісткових риб найчастіше проводилася на предмет зовнішніх паразитів (ектопаразитів), які викликають високу смертність і хворобливість. Діагностика хрящових риб була більш ретельної і часто проводилася з кожною окремою особиною.

Все зоопарки та акваріуми для визначення потенційного збудника робили аутопсію. Ця практика відрізняється від Європейського опитування, згідно з яким лише в 46% акваріумах проводили аутопсію риб, які перебувають на карантині. Менш поширеним методом була патогістології. Ймовірно, це обумовлено тим, що переважна частина інфекційних захворювань діагностувалася на основі макроскопічної аутопсії. Крім того, вартість і час, необхідний на проведення патогістології занадто великі.

У замкнутих системах карантину була поширена профілактична обробка. Кілька установ доповідали про агресивнішою профілактичній обробці риби, що надходить з дикої природи і великих точок збуту. Ці особи, як передбачається, є найбільш ймовірними носіями поширених і / або найбільш небезпечних інфекції.

Крім того, жорстка профілактична обробка проводилася під час вступу риби на великі виставки, тому що в подальшому можливості лікування були обмежені. Так як обробка може нашкодити тваринам і системі акваріума, і так як дані про токсичність речовин обмежені, більшість установ вели список потенційно чутливих видів.

Найчастіше, від ектопаразитів риб обробляли розчинами зі зміненою солоністю, сульфатом міді, формаліном і празиквантелом. Морську рибу занурювали в прісну воду, а прісноводну рибу в низькоконцентрованого гіперсолевие ванни. Це був єдиний протокол обробки на карантині в проточних системах.

Сульфат міді зазвичай використовувався для морських кісткових риб. Він був токсичним для багатьох видів, але при правильному застосуванні ефективно боровся з ектопаразитами – інфузорії і дінофлагелляти. Концентрація препарату повільно доводилася до терапевтичної дози і вимірювалася, по крайней мере, один раз в день. Переважна частина протоколів передбачала альтернативу для видів, які мали високу чутливість до сульфату міді.

Хлорохін також застосовувався як засіб проти найпростіших, ніж проти бактерій. Він мав більш високий терапевтичний індекс (показник широти безпечного дії лікарського засобу), ніж мідь.

Формалін призначався для обробки кісткових риб, переважно, в високих дозах на короткі проміжки часу. Процедура проходила в умовах додаткової аерації, тому що дуже сильно витрачався кисень. Деякі ванни тривали кілька днів; цікаво було б поспостерігати зміни концентрації формаліну з плином часу.

Для обробки хрящових і морських кісткових риб, головним чином, проти моногеней, зазвичай застосовувалися ванни з празиквантелом. Хоча цей препарат щодо доріг, він має широкий терапевтичний індекс і ефективний проти дорослих моногенетіческіх сосальщиков. Ймовірно, на концентрацію празиквантелом в розчині впливали метод його розчинення, хімія води, система змісту, тому цікаво було б виміряти зміна його рівня при обробці.

Обробка проти ендопаразитів проводилася рідко і включала оральное введення празиквантелом і Фенбендазол. Спостерігалася вражаюча варіабельність доз препаратів в желатинізовані кормі. Це пов’язано з нестачею даних про фармакокінетики і роз’єднання в літературних даних: доза празиквантелом для орального введення становила 4000-20000 мг / кг корму, а Фенбендазол – 5000-40000 мг / кг корму.

Ймовірно, старі протоколи збережуться до тих пір, поки не буде відзначений негативний ефект дії препаратів. Особливу занепокоєність викликає розкид дозувань для Фенбендазол, так як є відомості про його токсичності при введенні акулам орально (25 мг / кг). Оральне введення повинно враховувати споживання корму і дані про фармакокінетики і ефективності.

Антибактеріальні нітрофуран використовувалися в 25% установ безпосередньо після транспортування риб. Ці препарати призначалися для зниження бактеріального навантаження в воді, тому що транспортування неодмінно супроводжується втратою слизового секрету і травмами шкіри. Однак занурення в якості методу обробки небезпечно для персоналу і середовища, тому що людина контактує з розчином, і сам розчин скидається в каналізацію. У США використання нитрофуранов рекомендується тільки в самих крайніх випадках.

Спеціально для голкові риб запропоновані антибактеріальна обробка Артемій з їх подальшим згодовуванням і вакцинація від вібріозів. Важливо відзначити, що вібріоз є основною причиною високої смертності і хворобливості голкові, особливо, коли особини травмовані і піддалися стресу.

З метою зниження навантаження патогенними мікроорганізмами можна використовувати дезінфекцію. Хороші результати відзначаються при роботі ультрафіолетового стерилізатора. Хоча це найбільш поширена форма дезінфекції, їй має лише половина всіх установ, що пов’язано з дорожнечею устаткування.

Ефективну дезінфекцію також забезпечує озонування. Однак токсичність озону вимагає пильного контролю концентрації цього газу і його похідних. Озонатори були поширені серед карантинних систем. Це, ймовірно, обумовлено тим, що різна біологічна навантаження і маленький обсяг багатьох систем підвищував ризик виникнення токсичного ефекту.

Часто для адсорбції ліків застосовувався активоване вугілля. Потім, звичайно, він скидався в каналізацію. Загальний обсяг вугілля був невеликим, особливо, в порівнянні з аквакультурою, але скидання розчину з препаратом і вугілля в середу викликає побоювання.

Очищення і дезінфекція сильно відрізнялися серед установ. Проте, найбільш поширеними дезінфекторами були містять хлор розчини. Дезінфекція та очищення проводилися особливо ретельно при виявленні специфічного захворювання.

Групи риб аспекти карантину
Всі групи риб Мінімум 30 днів ізоляції. Регулярне спостереження. Аутопсія всіх загиблих, патогістології деяких.
прісноводні кісткові Формалін, якщо толерантні, повторення. Фенбендазол з кормом. Діагностика, якщо є загиблі і хворі
морські кісткові Занурення в прісну воду на початку і кінці карантину. Тривалі ванни з сульфатом міді, якщо толерантні. Формалін, якщо толерантні, повторення. Ванни з празиквантелом. Фенбендазол з кормом. Діагностика, якщо є загиблі і хворі
хрящові Ванни з празиквантелом. Спостереження вручну, діагностика

Методика і техніка лабораторного дослідження риб

27. Збудник інфекційних захворювань риб може бути виділений шляхом бактеріологічного дослідження органів і тканин хворих риб, із застосуванням звичайної бактеріологічної методики і техніки.

28. Для дослідження хворих риб їх беруть в живому стані, так як після смерті кишкова мікрофлора риби швидко наповнює весь організм і ускладнює бактеріологічне дослідження.

29. Призначену для дослідження рибу фіксують на продезінфікованої фанерною дошці стерильними препаравальнимі голками або тонкими цвяхами в області голови і хвоста. Потім проводять розтин і первинні посіви з уражених органів і тканин.

30. Для дослідження крові у великих коропів кров беруть після розтину піпеткою безпосередньо з серця. Місце проколу серцевого м’яза попередньо припікають шпадель. Пульсуюче серце самонагнетает в поставлену піпетку необхідну кількість крові, яку досліджують під мікроскопом або висівають на живильні середовища.

31. Посів з паренхіматозних органів і мускулатури риб виробляється загальноприйнятим у бактеріологічній практиці способом.

Як поживних середовищ використовують косою агар, рибо-пептони агар або рибо-пептони бульйон. У деяких випадках (віддаленість від бактеріологічної лабораторії) посіви роблять тільки на твердих середовищах. У лабораторії доставлені первинні посіви для виділення чистих культур висівають на чашки Петрі з агаром.

Дистильована вода 1 л
пептон 10 г
Кухонна сіль 5 г
1, 6-процентний спиртовий розчин бромтімолбляу 1 мл
Вуглеводи (глюкоза, лактоза, сахароза, мальтоза, манить) 5 м

pH (7,2 – 7,4) середовища встановлюють з кожним углеводом окремо, розливають в пробірку з маленькими бродильними пробірочку всередині. Дрібно стерилізують по 20 хвилин 3 рази через день.

Модифікація середовища Барзікова зводиться до того, що лакмус замінений бромтімолбляу. Застосування рідких вуглеводневих середовищ дозволяє вловити маленькими бродильними пробірочку навіть незначна кількість газу, що не завжди вдається на твердих середовищах Гісса. Бромтімолбляу, як індикатор, вельми чутливий до змін pH середовища.

33. Для виділення анаеробів роблять паралельні посіви на чашки Петрі з кров’яним агаром Цейслера і з середовищем Кітт-Тороцці. Засіяні чашки з агаром Цейслера поміщають в ексикатор, після чого в останньому за допомогою насоса створюють вакуум до 10 – 13 мм тиску ртутного стовпа. Для більш повного видалення кисню в ексикатор до відсмоктування повітря поміщають 5 г пирогалловой кислоти і 50 г 50-процентного водного розчину їдкого калію.

Після відсмоктування повітря з ексикатора пирогалловой кислоту з пакетика струшують в розчин їдкого калію. В результаті реакції між пирогалловой кислотою і їдким калієм у ексикаторі відбувається майже повне поглинання залишився кисню і створюються анаеробні умови. Для вирощування анаеробів ексикатор з засіяними чашками Петрі негайно поміщають в термостат.

При посівах на середу Кітт-Тороцці її після посіву відразу поміщають в термостат.

34. Для виділення фільтруються вірусів користуються методикою, прийнятої в медицині і ветеринарії. Комплексне бактеріологічне дослідження патологічного матеріалу від риб складається в паралельному виявленні аеробів, анаеробів і фільтруються вірусів як можливих збудників інфекційних хвороб риб.

35. Для обґрунтування постановки діагнозу на інвазійні захворювання риб з кожного ставка необхідно досліджувати з різних косяків і кубел не менше 25 малюків, сеголеток або годовиков ставкових риб. Більш дорослих риб досліджують в кількості 4 – 7 примірників і при особливої ​​потреби у великій кількості. Клінічно оглядають не менше 100 риб і реєструють виявлені у них відхилення від норми.

36. Для дослідження на ектопаразити беруть скальпелем зіскрібки слизу з тіла і окремо з зябер. Зіскрібки слизу переносять на предметне скло. Для зручності перегляду і обліку ектопаразитів слиз розбавляють невеликою кількістю (2 – 3 краплі) охолодженої кип’яченої води. Ретельно розмішати і рівномірно розподіливши слиз на предметному склі, покривають її покривним склом і розглядають спочатку під лупою, а потім під мікроскопом при малому збільшенні. При дослідженні риб на збудника костіазіса перегляд ведеться при сильному збільшенні.

37. При дослідженні на ендопаразитів роблять розтин і патолого-анатомічний огляд тканин і органів риб. У зв’язку з трудомісткістю повного паразитологічного розтину допускається дослідження лише тих органів, в яких найбільш часто зустрічаються ті чи інші паразити.

Мальков вагою 1 – 2 г можна розчавлює між двома предметними скельцями і в такому вигляді досліджувати під мікроскопом. При цьому враховують всіх паразитів.

Перед відправкою паразитів або шматочків органів з наявністю в них паразитів в баклабораторію на дослідження їх консервують в 70-процентному спирті. Замість спирту можна використовувати 4-відсотковий розчин формаліну (40% продажний формалін).

Кожен патологічний матеріал поміщають в окрему скляну баночку або пробірку і постачають етикеткою з точним позначенням виду і віку риби, органу, з якого вилучені паразити, часу і місця, де взято матеріал.

Етикетки підписують тушшю або твердим олівцем (не хімічним) і опускають в баночку з патологічним матеріалом. Після цього баночку або пробірку заливають сургучем чи мастикою, упаковують в ящик і посилають в лабораторію.

Застосування профілактичних та лікувальних ванн з 5-процентного водного розчину кухонної солі

38. При встановленні захворювань риб хілодоніазісом, тріходініазісом, костіазісом, гіродактілезом і дактілогірозом рибам-годовікам при весняному облові в зимувальних ставках застосовують лікувальні ванни з 5-процентного водного розчину хлористого натрію (повареної солі). При цьому загибель хілодона, тріходіни, кістки (без цист) досягає 100%, а гіродактілус і Дактилогирус 99%.

У неблагополучних по хілодоніазісу, тріходініазісу, костіазісу, гіродактілезу риб рибницьких господарствах лікувальні ванни застосовують всім виробникам коропа і сазана перед посадкою на нерест, а також сеголетков перед посадкою на зимівлю.

У рибоводних господарствах, благополучних по перерахованим вище захворювань коропа, ці ванни рекомендується застосовувати виробникам з профілактичною метою, перед посадкою на нерест.

39. Для приготування 5-процентного водного розчину хлористого натрію точно відважують 5 кг солі і розчиняють її в 100 л чистої ставкової води. Необхідно простежити, щоб сіль повністю розчинилася у воді. Брати сіль для приготування розчину без зважування, “на око”, категорично забороняється. Сіль повинна бути суха і за своєю якістю відповідати ОСТу 153-41.

40. При застосуванні ванн з розчином хлористого натрію з профілактичною і лікувальною метою рибу в них слід витримувати рівно 5 хвилин, по годинах. Витримка риби в розчині більше 5 хвилин викликає загибель її, а при скороченні терміну – зменшується загибель паразитів.

Фортеця кухонної солі в ваннах перевіряють ареометром. При встановленні по ареометру зниження процентного вмісту солі після першого пропускання риби розчин відновлюють додатковим додаванням солі з розрахунку.

41. Для проведення риб через сольові ванни в зимувальних і інших ставках застосовують установку, яка була дощату майданчик на палях. На цьому майданчику розміщують весь необхідний інвентар: чан, дерев’яний або брезентовий, з прісною водою, такий же чан з 5-відсотковим розчином солі, троє-четверо носилок, бічні стінки яких зроблені з мелкоячеечной поділи (сітка мешкаючи на рамку носилок), ваги і інший інвентар.

Насалик повинні бути зроблені таких розмірів, щоб вони вільно входили в чан. У чан з прісною водою ставлять носилки і в них відраховують 1,5 – 2 тис. Сеголетков (35 – 40 кг), потім ці носилки з рибою переміщають в чан з 5-відсотковим розчином кухонної солі. Після закінчення 5 хвилин рибу поміщають в промивально-сортувальний ящик з проточною водою, де її витримують 2 години, потім рибу направляють в зимувальні або інші ставки.

Після проведення через ванни 200 – 250 кг риби розчин виливають і замінюють новим. Необхідно стежити, щоб використаний сольовий розчин і проточна вода, в якій дотримувалися риба, не потрапляли в зимувальні, нерестові, вирастних і нагульні ставки.

42. П’ятивідсотковий розчин солі застосовують тільки в тому випадку, якщо заражені паразитами сеголетки і однорічні коропа мають задовільним загальним станом, зберігають здатність до нормального руху або мають незначні патологічні (нашкірні) зміни.

Сеголетки і однорічні коропа, сильно заражені паразитами, з ясно помітними ознаками хвороби (надмірне схуднення, втрата координації рухів, молочно блакитний наліт на шкірі, часткове омертвіння зябер), повинні бути виловлені і вибраковано, так як після застосування ванн вони у великій кількості гинуть протягом 10 – 15 діб внаслідок глибоких патологічних змін в організмі, які лікувальної ванній усунені бути не можуть.

43. Проводити через ванни нестандартних годовиков і сеголетков коропа середньою вагою менше 10 г не рекомендується, так як розчин для таких дрібних екземплярів шкідливий і небезпечний.

44. Ванни застосовують, коли ставкова вода має температуру не нижче 6 – 7 °, а температура розчину не нижче 5 °. При більш низьких температурах води і розчину частина паразитів залишається в живому стані. Не слід також застосовувати ванни при температурі води і розчину вище 19 °, так як такий розчин небезпечний для риб.

45. Щоб попередити передачу паразитів від виробників малька, виробників коропів за 2 – 3 дні до посадки на нерест пропускають через профілактичні ванни з 5-процентного розчину кухонної солі протягом 5 хвилин.

Застосування лікувальних і профілактичних ванн оформляють актом, який зберігають у справах господарства.

Ветеринарно-санітарна експертиза риби

62. Втратив чинність. – Інструкція від 31 травня 1971 р

63. Втратив чинність. – Інструкція від 31 травня 1971 р

64. Втратив чинність. – Інструкція від 31 травня 1971 р

65. Втратив чинність. – Інструкція від 31 травня 1971 р

66. Втратив чинність. – Інструкція від 31 травня 1971 р

67. Втратив чинність. – Інструкція від 31 травня 1971 р

Ссылка на основную публикацию